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相较于游离酶，固定化酶的稳定性和耐受性都略胜一筹。目前来说，固定化酶的方法很多，但大多数制备方法均存在缺点，难以实现连续，稳定的催化作用。本文采用交联法与吸附法结合来固定化酶。
本文的主要目的是制备多种高效的阳离子型聚合物，与辣根过氧化物酶(HRP)接枝后固定在玻璃载体上，得到活性较高的固定化酶，所做的主要工作和得到的结论如下所示：
(1)基于羧甲基纤维素(CMC)，选用甲基丙烯酰氧乙基三甲基氯化铵(DMC)为功能单体，过硫酸钾(KPS)为引发剂引发二者接枝共聚，经戊二醛(GA)改性后，得到阳离子型聚羧甲基纤维素CMC-g-(PDMC-r-GA)；经GA上醛基和辣根过氧化物酶(HRP )反应，HRP和聚合物CMC-g-(PDMC-r-GA)进行接枝共聚，得到CMC-g-(PDMC-r-GA)/HRP；通过吸附-交联法将生物酶接枝聚合物分别固定在盖玻片和玻璃微管上。并用紫外可见分光光度计(UV/vis)对固定化酶性能进行了分析研究。结果显示，CMC-g-(PDMC-r-GA)的成功制备，与HRP接枝固定后，生物酶保持良好的稳定性和活性，在414nm处的吸光度达到0.15左右。
(2)基于羧甲基纤维素(CMC)和甲基丙烯酸缩水甘油酯(GMA)，过硫酸钾引发二者接枝共聚，经乙二胺(EDA )和戊二醛改性后，得到阳离子型聚合物CMC-g-(PGMA/NH2-r-GA)；再经与酶交联后，得到CMC-g-(PGMA/NH2-r-GA)/HRP；通过吸附交联法将酶固定在玻璃载体上，并用紫外分光光度计(UV/vis)对酶的活性和稳定性进行测量。结果表明，固定后的生物酶活性较高，在414nm处的吸光度高达0.8左右。
(3)二者与HRP接枝后固定，固定后的酶均表现出较好的稳定性和活性，这证明了生物酶与聚合物接枝的可行性。
(4)相比聚合物CMC-g-(PDMC-r-GA)，阳离子聚合物CMC-g-(PGMA/NH2-r-GA)接枝酶固定后，载体为盖玻片时，酶在催化过程中，A414nm提高了4倍多，最高达到0.7左右；载体为玻璃微管时，固定化酶A414nm提高了4.5倍，最高达到0.8左右；主要是因为CMC-g-(PDMC-r-GA)/HRP与玻璃载体反应时，仅发生了阴阳离子吸附反应，而CMC-g-(PDMC-r-GA)/HRP与玻璃载体作用时，同时发生吸附和共价结合，因此固定的酶更牢固，固定的酶含量更多。
本文的主要目的是制备多种高效的阳离子型聚合物，与辣根过氧化物酶(HRP)接枝后固定在玻璃载体上，得到活性较高的固定化酶，所做的主要工作和得到的结论如下所示：
(1)基于羧甲基纤维素(CMC)，选用甲基丙烯酰氧乙基三甲基氯化铵(DMC)为功能单体，过硫酸钾(KPS)为引发剂引发二者接枝共聚，经戊二醛(GA)改性后，得到阳离子型聚羧甲基纤维素CMC-g-(PDMC-r-GA)；经GA上醛基和辣根过氧化物酶(HRP )反应，HRP和聚合物CMC-g-(PDMC-r-GA)进行接枝共聚，得到CMC-g-(PDMC-r-GA)/HRP；通过吸附-交联法将生物酶接枝聚合物分别固定在盖玻片和玻璃微管上。并用紫外可见分光光度计(UV/vis)对固定化酶性能进行了分析研究。结果显示，CMC-g-(PDMC-r-GA)的成功制备，与HRP接枝固定后，生物酶保持良好的稳定性和活性，在414nm处的吸光度达到0.15左右。
(2)基于羧甲基纤维素(CMC)和甲基丙烯酸缩水甘油酯(GMA)，过硫酸钾引发二者接枝共聚，经乙二胺(EDA )和戊二醛改性后，得到阳离子型聚合物CMC-g-(PGMA/NH2-r-GA)；再经与酶交联后，得到CMC-g-(PGMA/NH2-r-GA)/HRP；通过吸附交联法将酶固定在玻璃载体上，并用紫外分光光度计(UV/vis)对酶的活性和稳定性进行测量。结果表明，固定后的生物酶活性较高，在414nm处的吸光度高达0.8左右。
(3)二者与HRP接枝后固定，固定后的酶均表现出较好的稳定性和活性，这证明了生物酶与聚合物接枝的可行性。
(4)相比聚合物CMC-g-(PDMC-r-GA)，阳离子聚合物CMC-g-(PGMA/NH2-r-GA)接枝酶固定后，载体为盖玻片时，酶在催化过程中，A414nm提高了4倍多，最高达到0.7左右；载体为玻璃微管时，固定化酶A414nm提高了4.5倍，最高达到0.8左右；主要是因为CMC-g-(PDMC-r-GA)/HRP与玻璃载体反应时，仅发生了阴阳离子吸附反应，而CMC-g-(PDMC-r-GA)/HRP与玻璃载体作用时，同时发生吸附和共价结合，因此固定的酶更牢固，固定的酶含量更多。