第一部分：电刺激促进光损伤感光细胞存活的神经保护作用　　 体外培养感光细胞系(661W)，接种于六孔板贴壁后，放入光照培养箱中接受4～6 h光照强度为15，000 lux的宽谱蓝光照射。在光照后的24 h进行LDH细胞坏死测定实验、TUNEL凋亡染色及免疫荧光染色观察661W的凋亡情况以及形态学改变。结果显示：光照后，LDH实验显示59.7％±2.7％的661W细胞坏死，TUNEL显示70％左右的染色阳性即凋亡，而免疫荧光染色则发现正常661W呈扁平状，细胞之间连接紧密，但光损伤后661W突触变细长，细胞失去扁平形态，且细胞间隙明显变大，表明光损伤诱导感光细胞凋亡模型成功建立。　　 利用1 h双相方波、直流电刺激(3 ms，20 Hz，300～1600μ A)预先作用于光损伤661W和小胶质细胞或Müller细胞共培养体系，并将其视为干预组；将未接受电刺激的此共培养体系视为未干预对照组；正常661W细胞和小胶质细胞或Müller细胞共培养体系视为正常对照组。在共培养后3 h、6 h、12 h、24 h进行LDH实验，并在共培养后24 h进行TUNEL凋亡染色实验及免疫荧光染色。结果如下：LDH凋亡一时间曲线表明1000μA的电刺激预先作用于光损伤661W和小胶质细胞共培养组之后，相较于未干预组相对应时间点的细胞死亡率，从共培养后12 h开始661W的细胞死亡率显著降低，并保持相对恒定直到共培养后24 h；同样，1600μA的电刺激预先作用于光损伤661W和Müller细胞共培养组之后，从共培养后3 h开始661W的细胞死亡率显著降低，并逐渐加大降低幅度直到共培养后24 h。TUNEL染色则显示共培养后24 h，电刺激干预组的TUNEL染色阳性细胞比率较未干预组明显减少。免疫荧光染色也提示了光损伤661W细胞和小胶质细胞干预组的661W较未干预组细胞形态改变程度轻，细胞间隙更小。另一方面，我们也将电刺激总用于光损伤后单独培养的661W细胞，并在相同时间节点进行LDH、TUNEL及免疫荧光染色实验，但结果与作用于共培养体系的电刺激不同，电刺激干预并未减轻661W细胞的凋亡。　　 本部分的实验研究结果表明，电刺激能够减轻强光照射引起的感光细胞凋亡变性，但感光细胞本身对电刺激并没有反应，可能电刺激改变了胶质细胞的活性，而胶质细胞活性的改变转而影响了感光细胞的存活。　　 第二部分：光损伤诱导感光细胞变性激活视网膜胶质细胞，激活的胶质细胞进而影响光损伤感光细胞凋亡的作用　　 成功建立了光损伤诱导感光细胞变性的模型后，我们进一步利用胶质细胞与光损伤感光细胞共培养体系(未干预组)探索小胶质细胞和Müller细胞受光损伤感光细胞影响后的数量、形态学的改变以及相伴随的功能的变化，同时探索平行的661W细胞的生存状态变化。正常661W细胞和小胶质细胞或Müller细胞共培养组视为正常对照组。在共培养24 h后利用免疫荧光染色观察两组小胶质细胞或Müller细胞数量及形态学的差异；同时利用Real-time PCR和Western blot法在共培养后3 h，6 h，12 h，24 h对两组小胶质细胞所分泌的促炎因子IL－1β、TNF-α以及Müller细胞所分泌的神经营养因子BDNF、CNTF的基因表达量和蛋白分泌量两组差异以及时间趋势变化进行定量分析。并且运用LDH、TUNEL及免疫荧光染色等实验检测单独培养光损伤661W细胞和与小胶质细胞或Müller细胞共培养的661W细胞坏死和凋亡率的差异。　　 结果显示：免疫细胞化学实验发现与正常661W细胞共培养的小胶质细胞成静息状态，形态成分支状，突触长，胞体较小，而与光损伤661W细胞共培养的小胶质细胞成激活状态，形态成阿米巴样或圆形，突触短，胞体大，且数量较正常对照组增多。两组Müller细胞的形态则无显著差异。另外，在共培养后的24 h，Real-time PCR和Western blot显示与光损伤661W共培养的小胶质细胞IL-1β和TNF-α的基因和蛋白表达量较正常对照组显著上升，与光损伤661W共培养的Müller细胞BDNF和CNTF的基因和蛋白表达量也较正常对照组明显上调；蛋白量-时间趋势曲线则发现在正常对照组中，小胶质细胞分泌的IL-1β和TNF-α在共培养后3 h至24 h时间段内基本保持稳定且较低的水平。而相反的，与光损伤661W共培养的小胶质细胞分泌的IL-1β蛋白量则随着时间进展逐步升高，在共培养后24 h达到最高峰；同样，其所分泌的TNF-α蛋白量也随着时间上调，在共培养后12 h达到最高峰，之后到24 h时间段内略微下降。另一方面，正常对照组中的Müller细胞分泌的BDNF、CNTF蛋白量-时间曲线显示BDNF蛋白量随时间呈现逐渐衰减的趋势，而CNTF则相对保持稳定。然而与光损伤661W共培养的Müller细胞分泌的BDNF蛋白量迅速上调，在共培养后的6 h达到最高峰，之后略有下降；其所分泌的CNTF则逐步平稳上升。LDH、TUNEL等实验结果显示相较单独培养的光损伤661W细胞，与小胶质细胞共培养的光损伤661W细胞的坏死率随着时间进展显著上升；而与Müller细胞共培养的光损伤661W细胞的坏死率则明显减低。　　 本部分的实验研究发现光损伤诱导的感光细胞凋亡引发了小胶质细胞的激活和Müller细胞的反应性胶质化，并伴随着小胶质细胞分泌的促炎因子IL-1β和TNF-α和Müller细胞分泌的神经营养因子BDNF、CNTF的上调，并且小胶质细胞的激活加重了661W细胞的损伤，而Müller细胞的反应性胶质化则减轻了661W细胞的凋亡，表明了胶质细胞活性改变在光损伤诱导感光细胞变性过程起着重要的作用。　　 第三部分：电刺激干预光损伤感光细胞凋亡诱导的胶质细胞激活的作用　　 将1 h双相方波、直流电刺激(3 ms，20 Hz，300～1600μ A)预先作用于光损伤661W和小胶质细胞或Müller细胞共培养体系，视为干预组；将未接受电刺激的此共培养体系视为未干预对照组；正常661W细胞和小胶质细胞或Müller细胞共培养体系视为正常对照组。采用免疫荧光染色在共培养24 h后观察各组小胶质细胞及Müller细胞形态学、数量的差异；利用Real-time PCR和Westernblot法在共培养后3 h，6 h，12 h，24 h对各组小胶质细胞所分泌的促炎因子IL-1β、TNF-α以及Müller细胞所分泌的神经营养因子BDNF、CNTF的基因表达量和蛋白分泌量两组差异以及时间趋势变化进行定量分析。　　 结果显示：免疫学荧光染色显示的未干预对照组和正常对照组间的小胶质细胞和Müller细胞形态学差别如第一部分所述，电刺激干预组的小胶质细胞的阿米巴样的活化数量则较干预组明显减少，并且一部分细胞虽然没有出现像静息状态时的明显的分支状，但胞体呈扁平状态，我们将其视作“中间状态”；而电刺激干预组的Müller细胞则较未干预对照组和正常对照组的Müller细胞显得胞体更大，胞体内纤维组织更丰富，且细胞数量也明显增多。伴随着形态学的改变，Real-time PCR和Western blot结果显示电刺激干预组中的小胶质细胞IL-1β和TNF-α的基因和蛋白表达量较未干预组显著降低，Müller细胞BDNF和CNTF的基因和蛋白表达量较未干预组进一步升高；蛋白量-时间趋势曲线则显示电刺激干预抑制了未干预组中小胶质细胞IL-1β和TNF-α持续升高，分别在共培养后24 h和12 h降至最低最低点；而电刺激干预组中Müller细胞分泌的BDNF蛋白量较未干预组随时间上升幅度进一步加大；CNTF的分泌高峰则被提前至共培养后6 h，上升幅度增大并保持至共培养后24 h。　　 这部分实验结果表明：电刺激能够有效抑制由光损伤感光细胞诱导的小胶质细胞激活，也能够显著提升Müller细胞反应性胶质化，从而减轻小胶质细胞的毒性作用，促进Müller细胞的神经保护作用，证明了电刺激保护光损伤感光细胞是通过调控胶质活性这一机理，使得电刺激作为一种促进感光细胞存活的治疗方法效果更为确切。