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目的:Ribozyme对RNA分子具有核酸内切酶活性,可以水解mRNA分子阻断基因表达,对疾病基因进行转录后抑制。PD-1是淋巴细胞表面的抑制性受体,通过与其配体结合传递抑制性信号,与免疫功能低下和肿瘤的免疫逃逸有关。本实验以PD-1基因为靶基因,采用慢病毒包装Ribozyme技术,通过降低PD-1基因的表达减弱或消除其抑制性信号,恢复T淋巴细胞的功能达到免疫调节的目的,对肿瘤免疫治疗有应用意义。方法:提取Jurkat细胞基因组,基因扩增、克隆得到包含内含子和外显子的PD-1基因;提取Jurkat细胞总RNA,逆转录获得PD-1基因的cDNA。体外转录获得PD-1基因的pre-mRNA和mRNA,采用随机寡核苷酸库结合逆转录(reverse transcription with random oligo library, RT-ROL)法筛选出pre-mRNA和mRNA反义寡核苷酸结合靶点,采用RNase H和DNAzyme体外验证其有效性,最终确定Ribozyme作用靶点,针对靶点设计、构建PD-1-Ribozyme的慢病毒载体质粒,包装慢病毒,感染Jurkat细胞,采用RT-PCR和Western Blot分析感染细胞PD-1基因的表达,将感染慢病毒后的Jurkat细胞与肝癌细胞HepG2共培养,ELISA检测培养上清中细胞因子IL-2、IL-10及IFN-γ的分泌及四唑盐比色法(MTS)检测感染后Jurkat细胞对HepG2的杀伤功能,评价下调基因表达的效果。结果:成功的构建了PD-1DNA和cDNA的阳性克隆;运用RT-ROL法筛选靶点、体外验证最终确定6个反义寡核苷酸结合靶点;对6个有效靶点设计构建了PD-1-Ribozyme质粒载体,包装出Ribozyme慢病毒并感染了Jurkat细胞;RT-PCR测得KD2、KD3、KD4、KD5四组mRNA水平表达下调,其中KD4下调效果达到80%,为mRNA水平最佳靶点,Western Blot结果显示KD2、KD3、KD4、KD5四组显著下调蛋白表达水平,其中KD4为效果最佳,达到80%;ELISA结果显示上清中IL-2的浓度KD3、KD4组分别为141.46±1.57pg/ml、190.33±2.89pg/ml,空白对照组为122.21±6.80pg/ml、阴性对照组为120.50±9.85pg/ml,两者显著高于对照组(p<0.01),KD2组的浓度为145.96±11.08pg/ml,明显高于空白对照组和阴性对照组(p<0.05);上清中IL-10的浓度KD1、KD2、KD3、KD4组的浓度分别为34.79±1.60pg/ml、42.17±0.32pg/ml、42.62±0.62pg/ml和61.25±4.04pg/ml,均高于空白对照组(33.05±0.94pg/ml)、阴性对照组(33.44±1.69pg/ml),(p<0.01),KD5组的浓度为41.13±0.48pg/ml,明显高于空白对照和阴性对照组(p<0.05);上清中IFN-γ的浓度KD2、KD4、KD5组分别为47.50±1.67pg/ml、68.17±2.03pg/ml和47.83±2.73pg/ml,空白对照组为35.94±1.17pg/ml、阴性对照组为34.72±1.95pg/ml,三个干预组均明显高于对照组(p<0.01),KD3组则为42.28±2.69pg/ml,显著高于空白和阴性对照组(p<0.05)。MTS实验结果显示,HepG2细胞的存活率KD2、KD3、KD4、KD5分别为57%、63%、52%、62%,与空白对照组(1)和阴性对照组(1)相比明显降低,p<0.05。结论:靶点筛选实验中,pre-mRNA和mRNA共筛选到6个靶点,其中6号靶点位于内含子上,其余5个位于外显子上;针对这6个靶点设计包装的Ribozyme慢病毒感染Jurkat细胞,RT-PCR与Western Blot结果基本一致,4号靶点为最佳靶点,其余效果较好的靶点依次为2、3、5号,内含子上的6号靶点效果较差;感染慢病毒的细胞与HepG2细胞共培养后,细胞因子的分泌2、3、4号靶点较空白对照组与阴性对照组明显上升,共培养体系中HepG2细胞的存活率2、3、4、5号靶点明显低于空白对照组与阴性对照组,细胞学实验证明针对PD-1基因靶点的Ribozyme具有下调基因表达的功能,并表明PD-1表达下调的Jurkat细胞能导致共培养的肝癌细胞HepG2出现增殖抑制。实验表明从靶点筛选设计的Ribozyme有效,为Ribozyme技术在下调基因表达和肿瘤免疫治疗的进一步应用提供了基础。