[目的]探究舌鳞状细胞癌（Tongue squamous cell carcinoma,TSCC）来源的外泌体对正常成纤维细胞（Normal Fibroblasts,NFs）增殖,迁移等生物学特性的影响,并通过转录组高通量测序结果,探索TSCC来源的外泌体对成纤维细胞生物学特性改变的相关机制,以期为口腔鳞状细胞癌（Oral squamous cell carcinoma,OSCC）肿瘤微环境中细胞互动过程提供实验基础,也为OSCC的靶向治疗提供不同的思路。[方法]（1）TSCC外泌体对NFs的生物学影响:培养TSCC细胞株（CAL-27、HSC-4和UMSCC6）,从其上清液中提取并鉴定TSCC外泌体,将外泌体分别作用于NFs,通过CCK-8法检测细胞的增殖能力,划痕实验检测细胞的迁移能力,采用Q-PCR法检测TSCC来源的外泌体刺激NFs后癌相关成纤维细胞（Cancer-associated fibroblasts,CAFs）相关基因α-SMA、FAP的表达水平,采用免疫印迹法（Western blot,WB）检测TSCC来源的外泌体刺激NFs后CAFs相关蛋白α-SMA、FAP的表达情况。（2）转录组高通量测序:TSCC来源外泌体分别刺激NFs,并提取其RNA,并进行高通量测序。利用高通量测序技术检测所得的RNA表达谱,筛选出差异RNA,对差异RNA进行KEGG富集分析,并通过Q-PCR法验证高通量测序结果。[结果]（1）TSCC外泌体对NFs的生物学影响:3株TSCC来源外泌体包膜完整,呈圆形或椭圆形,并且都能特异性表达HSP90和TSG101蛋白,粒径测得3株TSCC来源的外泌体粒径主要集中在30-150nm之间。3株TSCC来源的外泌体处理NFs 48h后,细胞的增殖能力都明显增强（P<0.01）。TSCC外泌体刺激NFs 12h、24h后,NFs迁移率明显加强（P<0.01）。CAL-27与UMSCC6来源外泌体处理NFs 48h后,α-SMA、FAP基因的转录水平上升,HSC-4来源的外泌体处理NFs 48h后,α-SMA基因的转录水平上升。3株TSCC来源外泌体处理NFs 48h后,α-SMA、FAP蛋白的表达均增强（P<0.05）。（2）转录组高通量测序:与对照组相比,CAL-27-exo组RNA差异表达有2262个,其中上调1191个,下调1071个,HSC-4-exo组RNA差异表达有1691个,其中上调746个,下调945个,UMSCC6-exo 1组RNA差异表达有5935个,其中上调2848个,下调3087个。生物信息学分析表明上述差异表达的RNA参与了 NFs活化的过程。最后在|log2foldchange|值≥1.5,P<0.05范围中随机选取6个差异表达RNA,通过Q-PCR验证了高通量测序的可靠性。[结论]TSCC来源的外泌体可能促使NFs转化为CAFs。TSCC来源的外泌体诱导NFs转化为CAFs过程中可能涉及多条信号通路。